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Specification :(In Japanese)動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤

Country (In Japanese)日本国特許庁(JP)
Gazette (In Japanese)再公表特許(A1)
Date of issue Dec 6, 2018
Title of the invention, or title of the device (In Japanese)動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤
IPC (International Patent Classification) C12N   1/04        (2006.01)
C12N   5/07        (2010.01)
FI (File Index) C12N 1/04
C12N 5/07
Demand for international preliminary examination (In Japanese)未請求
Total pages 42
Application Number P2018-500176
International application number PCT/JP2017/005592
International publication number WO2017/141991
Date of international filing Feb 15, 2017
Date of international publication Aug 24, 2017
Application number of the priority 2016027612
Priority date Feb 17, 2016
Claim of priority (country) (In Japanese)日本国(JP)
Designated state AP(BW , GH , GM , KE , LR , LS , MW , MZ , NA , RW , SD , SL , ST , SZ , TZ , UG , ZM , ZW) , EA(AM , AZ , BY , KG , KZ , RU , TJ , TM) , EP(AL , AT , BE , BG , CH , CY , CZ , DE , DK , EE , ES , FI , FR , GB , GR , HR , HU , IE , IS , IT , LT , LU , LV , MC , MK , MT , NL , NO , PL , PT , RO , RS , SE , SI , SK , SM , TR) , OA(BF , BJ , CF , CG , CI , CM , GA , GN , GQ , GW , KM , ML , MR , NE , SN , TD , TG) , AE , AG , AL , AM , AO , AT , AU , AZ , BA , BB , BG , BH , BN , BR , BW , BY , BZ , CA , CH , CL , CN , CO , CR , CU , CZ , DE , DJ , DK , DM , DO , DZ , EC , EE , EG , ES , FI , GB , GD , GE , GH , GM , GT , HN , HR , HU , ID , IL , IN , IR , IS , JP , KE , KG , KH , KN , KP , KR , KW , KZ , LA , LC , LK , LR , LS , LU , LY , MA , MD , ME , MG , MK , MN , MW , MX , MY , MZ , NA , NG , NI , NO , NZ , OM , PA , PE , PG , PH , PL , PT , QA , RO , RS , RU , RW , SA , SC , SD , SE , SG , SK , SL , SM , ST , SV , SY , TH , TJ , TM , TN , TR , TT , TZ
Inventor, or creator of device (In Japanese)【氏名】松村 和明
【氏名】中 俊明
Applicant (In Japanese)【識別番号】304024430
【氏名又は名称】国立大学法人北陸先端科学技術大学院大学
【識別番号】000253019
【氏名又は名称】澁谷工業株式会社
Representative (In Japanese)【識別番号】110000523、【氏名又は名称】アクシス国際特許業務法人
【識別番号】100127133、【弁理士】、【氏名又は名称】小板橋 浩之
Request for examination (In Japanese)未請求
Theme code 4B065
F-term 4B065AA90X
4B065BD12
4B065BD27
4B065BD32
4B065BD36
4B065BD50
4B065CA44
Abstract (In Japanese)(a)ε-ポリ-L-リジンをブチル無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物;(b)ε-ポリ-L-リジンを、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物;又は(c)ε-ポリ-L-リジンを、式Iで表される化合物と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物、からなる群から選択された両性高分子化合物と、(d)エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子とを含む動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤、及び該ガラス化状態安定化剤を含有する動物細胞凍結保存液によって、優れたガラス化能を有する動物細胞凍結保存液を提供する。
Scope of claims (In Japanese)【請求項1】
以下の(a)、(b)及び(c)からなる群から選択された、アミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物と、
(d)エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子とを含む、動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤:
(a) ε-ポリ-L-リジンをブチル無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物;
(b) ε-ポリ-L-リジンを、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物; 又は
(c) ε-ポリ-L-リジンを、次の式I:
【化1】
JP2017141991A1_000023t.gif
(ただし、上記の式中、
R1及びR2は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR1及びR2が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基であり;
R3及びR4は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR3及びR4が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基であり;
R5及びR6は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR5及びR6が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基である)
で表される化合物と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物。
【請求項2】
式Iで表される化合物が、次の式II:
【化2】
JP2017141991A1_000024t.gif
(ただし、上記の式中、
R1及びR2は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR1及びR2が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基である)
で表される化合物である、請求項1に記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
【請求項3】
両性高分子化合物において、ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、カルボキシル化されたアミノ基の割合が、50%~75%の範囲にある、請求項1又は請求項2に記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
【請求項4】
ε-ポリ-L-リジンを、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物が、
ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、無水コハク酸との反応によってカルボキシル化されたアミノ基の数Aに対する、
ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、ブチル無水コハク酸との反応によってカルボキシル化されたアミノ基の数Bの比率B/Aが、
2/30~40/30の範囲にある、請求項1~3のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
【請求項5】
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子の分子量が、10,000~1,000,000の範囲にある、請求項1~4のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
【請求項6】
請求項1~5のいずれかに記載された動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤を含有する生理溶液からなる、動物細胞凍結保存液。
【請求項7】
請求項1~5のいずれかに記載された動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤を含有し、
エチレングリコール又はプロピレングリコールを、3~8Mの濃度で含有する、生理溶液からなる、動物細胞凍結保存液。
【請求項8】
さらに、スクロースを、0.1~1Mの濃度で含有する、請求項7に記載の動物細胞凍結保存液。
【請求項9】
(a)、(b)及び(c)からなる群から選択された両性高分子化合物を、2~40重量%で含有し、
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子を、1~30重量%で含有する、請求項6~8のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液。
【請求項10】
動物細胞凍結保存液のガラス転移点が、-135℃~-80℃である、請求項6~9のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液。
【請求項11】
請求項6~10のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液中へ、動物細胞を浸漬する工程、
動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、降温して凍結する工程、
を含む、動物細胞凍結保存方法。
【請求項12】
動物細胞を、降温して凍結する工程の後に、
凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、昇温して解凍する工程、
を含む、請求項11に記載の動物細胞凍結保存方法。
【請求項13】
動物細胞を、降温して凍結する工程が、
動物細胞を、降温してガラス化状態で凍結する工程、である、請求項11~12のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
【請求項14】
動物細胞を、昇温して解凍する工程が、
動物細胞を、昇温して再結晶化することなく解凍する工程、である、請求項12~13のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
【請求項15】
降温して凍結する工程が、
降温速度5℃/分~50℃/分で降温して凍結する工程、である、請求項11~14のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
【請求項16】
昇温して解凍する工程が、
昇温速度5℃/分~100℃/分で昇温して解凍する工程、である、請求項12~15のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
【請求項17】
動物細胞を、降温して凍結する工程の後で、
凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、昇温して解凍する工程の前に、
凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、-196℃~-75℃で保存する工程、
を含む、請求項12~16のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
Detailed description of the invention (In Japanese)【技術分野】
【0001】
本発明は、動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤、及び該ガラス化状態安定化剤を含有する動物細胞凍結保存液に関する。
【背景技術】
【0002】
近年、再生医療の臨床応用への期待が高まっている。このための基本技術として、細胞、細胞シート、三次元形状の細胞構造体、組織を、凍結保存する技術が必要とされている。このような技術として、凍結保護物質を添加して、対象の損傷を防ぎつつ、凍結保存する技術がある。このような凍結保護物質として、ジメチルスルホキシド(DMSO)(O=S(CH32)、グリセリンなどが知られている。
【0003】
DMSOやグリセリンは、分散した細胞に対する凍結保存での使用には、十分な実績がある。しかし、DMSOやグリセリンは、細胞シート、三次元形状の細胞構造体、組織などに対する凍結保存での使用では、解凍後にしばしば損傷した状態を生じて、ダメージを残してしまう。この損傷が、凍結時の氷晶形成や脱水収縮から生じるのではないかと考えて、氷の結晶化を制御して、アモルフォスの状態のままで固化させる、ガラス化法が、試みられている。
【0004】
ガラス化法は、受精卵の凍結手法として発展してきたものであり、従来のガラス化法は、一般に、急速な凍結速度と濃い溶質濃度によって、水溶液をガラス化させることを意図している。例えば、マウスの受精卵のガラス化溶液として、DAP213が知られている。DAP213は、DMSO 2M、アセトアミド 1M、プロピレングリコール 3Mの溶液であり、濃度が高く、毒性も高くなっている。典型的な使用法は、マウスの受精卵に含有されている水を、この溶液で置換し、液体窒素に直接浸漬して、ガラス化状態を得る手法である。しかし、このようなガラス化溶液によるガラス化では、細胞毒性が高く、さらに解凍時の再結晶化によるダメージも高いとされている。
【0005】
そこで、本発明者らは、凍結保護物質を検討して、ガラス化法を改良することを試みてきた(特許文献1)。
【0006】
特許文献2には、ショ糖多量体高分子の製造が開示されている。
【先行技術文献】
【0007】

【特許文献1】特許第5630979号公報
【特許文献2】米国特許第3300474号明細書
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【0008】
特許文献1に開示されたカルボキシル化ポリリジンを含む凍結保存液は、ガラス化能に優れた凍結保存液であるが、さらに優れたガラス化能を有する新規な凍結保存液が、求められている。
【0009】
したがって、本発明の目的は、優れたガラス化能を有する新規な動物細胞凍結保存液を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【0010】
本発明者は、鋭意研究の結果、以下に示す両性高分子化合物を動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤として使用した動物細胞凍結保存液によって、上記目的を達成できることを見いだして、本発明に到達した。
【0011】
したがって、本発明は次の(1)以下を含む。
(1)
以下の(a)、(b)及び(c)からなる群から選択された、アミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物と、
(d)エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子とを含む、動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤:
(a) ε-ポリ-L-リジンをブチル無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物;
(b) ε-ポリ-L-リジンを、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物; 又は
(c) ε-ポリ-L-リジンを、次の式I:
【化1】
JP2017141991A1_000002t.gif
(ただし、上記の式中、
R1及びR2は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR1及びR2が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基であり;
R3及びR4は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR3及びR4が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基であり;
R5及びR6は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR5及びR6が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基である)
で表される化合物と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物。
(2)
式Iで表される化合物が、次の式II:
【化2】
JP2017141991A1_000003t.gif
(ただし、上記の式中、
R1及びR2は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR1及びR2が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基である)
で表される化合物である、(1)に記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
(3)
両性高分子化合物において、ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、カルボキシル化されたアミノ基の割合が、50%~75%の範囲にある、(1)又は(2)に記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
(4)
ε-ポリ-L-リジンを、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物が、
ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、無水コハク酸との反応によってカルボキシル化されたアミノ基の数Aに対する、
ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、ブチル無水コハク酸との反応によってカルボキシル化されたアミノ基の数Bの比率B/Aが、
2/30~40/30の範囲にある、(1)~(3)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
(5)
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子の分子量が、10,000~1,000,000の範囲にある、(1)~(4)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤。
(6)
(1)~(5)のいずれかに記載された動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤を含有する生理溶液からなる、動物細胞凍結保存液。
(7)
(1)~(5)のいずれかに記載された動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤を含有し、
エチレングリコール又はプロピレングリコールを、3~8Mの濃度で含有する、生理溶液からなる、動物細胞凍結保存液。
(8)
さらに、スクロースを、0.1~1Mの濃度で含有する、(7)に記載の動物細胞凍結保存液。
(9)
(a)、(b)及び(c)からなる群から選択された両性高分子化合物を、2~40重量%で含有し、
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子を、1~30重量%で含有する、(6)~(8)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液。
(10)
動物細胞凍結保存液のガラス転移点が、-135℃~-80℃である、(6)~(9)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液。
(11)
(6)~(10)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存液中へ、動物細胞を浸漬する工程、
動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、降温して凍結する工程、
を含む、動物細胞凍結保存方法。
(12)
動物細胞を、降温して凍結する工程の後に、
凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、昇温して解凍する工程、
を含む、(11)に記載の動物細胞凍結保存方法。
(13)
動物細胞を、降温して凍結する工程が、
動物細胞を、降温してガラス化状態で凍結する工程、である、(11)~(12)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
(14)
動物細胞を、昇温して解凍する工程が、
動物細胞を、昇温して再結晶化することなく解凍する工程、である、(12)~(13)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
(15)
降温して凍結する工程が、
降温速度5℃/分~50℃/分で降温して凍結する工程、である、(11)~(14)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
(16)
昇温して解凍する工程が、
昇温速度5℃/分~100℃/分で昇温して解凍する工程、である、(12)~(15)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
(17)
動物細胞を、降温して凍結する工程の後で、
凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、昇温して解凍する工程の前に、
凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、-196℃~-75℃で保存する工程、
を含む、(12)~(16)のいずれかに記載の動物細胞凍結保存方法。
【発明の効果】
【0012】
本発明によれば、優れたガラス化能を有する動物細胞凍結保存液を得ることができる。この動物細胞凍結保存液を使用すれば、従来よりも遅い降温速度であっても結晶化が抑制されて、ガラス化状態を維持しつつ、凍結保存できる。また、昇温時においても、再結晶化が抑制されて、ガラス化状態が安定に維持されつつ、解凍することができる。そのために、本発明の動物細胞凍結保存液によれば、動物細胞を高い生存率で凍結解凍することができる。
【図面の簡単な説明】
【0013】
【図1】図1は、昇温速度50℃/minでの従来のガラス化液のDSCの測定の結果を示すグラフである。
【図2a】図2aは、COOH-PLLによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図2b】図2bは、BSA-PLLによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図2c】図2cは、BSA(35)-SA(30)-PLLによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図3a】図3aは、BSA-PLL、EG5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図3b】図3bは、BSA-PLL、EG4.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図4】図4は、BSA(35)-SA(30)-PLL、EG5.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図5a】図5aは、COOH-PLLによるガラス化液のDSC測定による再結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図5b】図5bは、BSA-PLLによるガラス化液のDSC測定による再結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図5c】図5cは、BSA(35)-SA(30)-PLLによるガラス化液のDSC測定による再結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図6a】図6aは、各ガラス化液による細胞生存率を示すグラフである。
【図6b】図6bは、各ガラス化液による細胞生存率を示すグラフである。
【図7a】図7aは、DMGA-PLL、EG6Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図7b】図7bは、DMGA-PLL、EG5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図7c】図7cは、DMGA-PLL、EG4.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図7d】図7dは、DMGA-PLL、EG4Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図8】図8は、EG6.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図9】図9は、COOH-PLL、EG6.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図10a】図10aは、COOH-PLL、EG5.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図10b】図10bは、COOH-PLL、EG5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図11a】図11aは、BSA-PLL、EG5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図11b】図11bは、BSA-PLL、EG4.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図12a】図12aは、DMGA-PLL、EG4.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図12b】図12bは、DMGA-PLL、EG4Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図13a】図13aは、COOH-PLL、EG6Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図13b】図13bは、BSA-PLL、EG6Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図13c】図13cは、DMGA-PLL、EG6Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。
【図14a】図14aは、EG6Mによるガラス化液によって凍結解凍した細胞シートを二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図14b】図14bは、COOH-PLL、EG6Mによるガラス化液によって凍結解凍した細胞シートを二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図14c】図14cは、BSA-PLL、EG6Mによるガラス化液によって凍結解凍した細胞シートを二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図14d】図14dは、DMGA-PLL、EG6Mによるガラス化液によって凍結解凍した細胞シートを二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図15】図15は、各ガラス化液における凍結解凍後の細胞の生存率を示すグラフである。
【図16】図16は、各種ガラス化液の再結晶化挙動を示すグラフである。
【図17】図17は、DMGA-PLLガラス化液(DMGA-PLL25mM、Su 0.5M、EG6.0M、Ficoll10%)の再結晶化挙動を示すグラフである。
【図18】図18は、EG6M、スクロース0.5M、フィコール10%溶液に対して、DMGA-PLL又はCOOH-PLL(SA-PLL)を25mM添加したガラス化液を-80℃に3時間放置した後の外観を示す写真である。
【図19】図19は、EG6M、スクロース0.5M、DMGA25mMの溶液に対して各多糖類を添加したガラス化液を-80℃に3時間放置した後の外観を示す写真である。
【図20a】図20aは、ガラス化液(EG6M、Su0.5M)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1時間放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図20b】図20bは、ガラス化液(COOH-PLL25mM、EG6M、Su0.5M)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1時間放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図20c】図20cは、ガラス化液(DMGA-PLL25mM、EG6M、Su0.5M)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1時間放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図20d】図20dは、ガラス化液(DMGA-PLL25mM、EG6M、Su0.5M、Ficoll 10%)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1時間放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図21a】図21aは、ガラス化液(EG6M、Su0.5M)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1日放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図21b】図21bは、ガラス化液(COOH-PLL25mM、EG6M、Su0.5M)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1日放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図21c】図21cは、ガラス化液(DMGA-PLL25mM、EG6M、Su0.5M)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1日放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【図21d】図21dは、ガラス化液(DMGA-PLL25mM、EG6M、Su0.5M、Ficoll 10%)を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1日放置した後、二重染色した蛍光顕微鏡写真である。
【発明を実施するための形態】
【0014】
具体的な実施の形態をあげて、以下に本発明を詳細に説明する。本発明は、以下にあげる具体的な実施の形態に限定されるものではない。

【0015】
[動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤]
本発明の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤は、以下の(a)、(b)及び(c)からなる群から選択された、アミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物と、(d)エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子とを含む、動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤にある:
(a) ε-ポリ-L-リジンをブチル無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物;
(b) ε-ポリ-L-リジンを、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物; 又は
(c) ε-ポリ-L-リジンを、次の式I:
【化3】
JP2017141991A1_000004t.gif
(ただし、上記の式中、
R1及びR2は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR1及びR2が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基であり;
R3及びR4は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR3及びR4が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基であり;
R5及びR6は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基であるか、あるいはR5及びR6が一体となって形成されたC1~C6のアルカン-ジイル基である)
で表される化合物と反応させてカルボキシル化した両性高分子化合物。

【0016】
[ε-ポリ-L-リジン]
ε-ポリ-L-リジンは、公知のε-ポリ-L-リジンを使用することができる。ε-ポリ-L-リジンは、例えば分子量が100~100,000であり、好適な実施の態様において、微生物または酵素により生産される数平均分子量が例えば1000~2万、1000~1万のε-ポリ-L-リジンを使用することができる。ε-ポリ-L-リジンは、ストレプトマイセス属(Streptomyces)に属する放線菌により生産されてもっぱら食品添加物として用いられており、重合度15~35のものの他、重合度が20以下のものの生産も試みられている。数平均分子量または数平均重合度の測定は、SDS-PAGE(ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動)法により、例えば、アトー(株)製の電気泳動装置及びデンシトグラフ(AE-6920V型)を用いて容易に測定することができる。加熱処理による高分子量化により分子量3万以上として用いることもできる。末端のみにフリーのカルボキシル基を有するポリリジンは、側鎖に1級アミノ基を有しており、このアミノ基が、後述する反応によってカルボキシル化される。

【0017】
[ε-ポリ-L-リジンのアミノ基のカルボキシル化]
アミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物は、ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、カルボキシル化されたアミノ基の割合を、例えば50%~75%、60%~70%の範囲とすることができる。

【0018】
[BSA-PLL]
ブチル無水コハク酸(BSA)は、実施例に記載の化学反応式の通り、ε-ポリ-L-リジン(PLL)の側鎖のアミノ基と反応して、カルボキシル化した両性高分子化合物(BSA-PLL)を生成し、これはアミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物であり、本発明の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤である。

【0019】
[BSA-SA-PLL]
ε-ポリ-L-リジン(PLL)の側鎖のアミノ基が、ブチル無水コハク酸(BSA)及び無水コハク酸(SA)と反応して、カルボキシル化した両性高分子化合物(BSA-SA-PLL)は、アミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物であり、本発明の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤である。ε-ポリ-L-リジンとの反応は、ブチル無水コハク酸及び無水コハク酸を、同時に反応させてもよく、前後して反応させてもよく、いずれを前又は後に反応させてもよい。ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、無水コハク酸との反応によってカルボキシル化されたアミノ基の数Aに対する、ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基のうち、ブチル無水コハク酸との反応によってカルボキシル化されたアミノ基の数Bの比率B/Aを、例えば、2/30~40/30の範囲、10/30~40/30の範囲、30/40~40/30の範囲とすることができる。

【0020】
[GA-PLL]
次の式Iで表されるGA誘導体(グルタル酸無水物誘導体)は、ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基と反応して、カルボキシル化した両性高分子化合物(GA-PLL)を生成し、これはアミノ基及びカルボキシル基を同一分子中に有する両性高分子化合物であり、本発明の動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤である。

【0021】
【化4】
JP2017141991A1_000005t.gif

【0022】
ただし、上記の式中、R1及びR2は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基とすることができ、あるいはR1及びR2が一体となって、C1~C6のアルカン-ジイル基を形成することができる。C1~C4のアルキル基は、例えばC1~C3、C1~C2のアルキル基とすることができる。アルカン-ジイル基としては、例えば、C1~C3のアルカン-1,1-ジイル基、C4~C6のアルキレン基をあげることができる。R1とR2の組み合わせとして、例えば、水素原子と水素原子、水素原子とメチル基、水素原子とエチル基、メチル基とメチル基、メチル基とエチル基、エチル基とエチル基をあげることができる。C1~C3のアルカン-1,1-ジイル基として、例えば、メタン-1,1-ジイル基、エタン-1,1-ジイル基をあげることができる。C4~C6のアルキレン基として、例えば、テトラメチレン基(ブタン-1,4-ジイル基)、ペンタメチレン基(ペンタン-1,5-ジイル基)をあげることができる。

【0023】
上記の式中、R3及びR4は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基とすることができ、あるいはR3及びR4が一体となって、C1~C6のアルカン-ジイル基を形成することができる。C1~C4のアルキル基は、例えばC1~C3、C1~C2のアルキル基とすることができる。アルカン-ジイル基としては、例えば、C1~C3のアルカン-1,1-ジイル基、C4~C6のアルキレン基をあげることができる。R3とR4の組み合わせとして、例えば、水素原子と水素原子、水素原子とメチル基、水素原子とエチル基、メチル基とメチル基、メチル基とエチル基、エチル基とエチル基をあげることができる。C1~C3のアルカン-1,1-ジイル基として、例えば、メタン-1,1-ジイル基、エタン-1,1-ジイル基をあげることができる。C4~C6のアルキレン基として、例えば、テトラメチレン基(ブタン-1,4-ジイル基)、ペンタメチレン基(ペンタン-1,5-ジイル基)をあげることができる。

【0024】
上記の式中、R5及びR6は、それぞれ独立に、水素原子又はC1~C4のアルキル基とすることができ、あるいはR5及びR6が一体となって、C1~C6のアルカン-ジイル基を形成することができる。C1~C4のアルキル基は、例えばC1~C3、C1~C2のアルキル基とすることができる。アルカン-ジイル基としては、例えば、C1~C3のアルカン-1,1-ジイル基、C4~C6のアルキレン基をあげることができる。R5とR6の組み合わせとして、例えば、水素原子と水素原子、水素原子とメチル基、水素原子とエチル基、メチル基とメチル基、メチル基とエチル基、エチル基とエチル基をあげることができる。C1~C3のアルカン-1,1-ジイル基として、例えば、メタン-1,1-ジイル基、エタン-1,1-ジイル基をあげることができる。C4~C6のアルキレン基として、例えば、テトラメチレン基(ブタン-1,4-ジイル基)、ペンタメチレン基(ペンタン-1,5-ジイル基)をあげることができる。

【0025】
好適な実施の態様において、上記の式中、R1及びR2を上述の基として、R3、R4、R5、R6を水素原子とすることができる。すなわち、次の式IIで表されるGA誘導体とすることができる。

【0026】
【化5】
JP2017141991A1_000006t.gif

【0027】
好適な実施の態様において、上記の式中、R3及びR4を上述の基として、R1、R2、R5、R6を水素原子とすることができる。すなわち、次の式で表されるGA誘導体とすることができる。このGA誘導体は、言うまでもなく、上記の式中、R5及びR6を上述の基として、R1、R2、R3、R4を水素原子としたGA誘導体と等価である。

【0028】
【化6】
JP2017141991A1_000007t.gif

【0029】
このようなGA誘導体として、具体的には、例えば、以下の構造の化合物をあげることができる:

【0030】
3,3-ジメチルグルタル酸無水物(DMGA):
【化7】
JP2017141991A1_000008t.gif

【0031】
グルタル酸無水物(GA):
【化8】
JP2017141991A1_000009t.gif

【0032】
3-メチルグルタル酸無水物(MGA):
【化9】
JP2017141991A1_000010t.gif

【0033】
2,2-ジメチルグルタル酸無水物:
【化10】
JP2017141991A1_000011t.gif

【0034】
3,3-テトラメチレングルタル酸無水物:
【化11】
JP2017141991A1_000012t.gif

【0035】
3-オキサスピロ[5,5]ウンデカン-2,4-ジオン(3,3-ペンタメチレングルタル酸無水物):
【化12】
JP2017141991A1_000013t.gif

【0036】
[DMGA-PLL]
好適な実施の態様において、3,3-ジメチルグルタル酸無水物(DMGA)が、ε-ポリ-L-リジンの側鎖のアミノ基と反応して、カルボキシル化した両性高分子化合物(DMGA-PLL)を得ることができる。

【0037】
[エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子]
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子は、ショ糖をエピクロロヒドリン架橋して製造されたショ糖多量体からなる水溶性高分子である。エピクロロヒドリン架橋は、塩基性条件下で、ショ糖分子中の水酸基にエピクロロヒドリンが付加し、生じたエポキシが隣接したショ糖分子中の水酸基へと付加して生じる架橋である。エピクロロヒドリン架橋の反応式を次に例示して示す:

【0038】
【化13】
JP2017141991A1_000014t.gif

【0039】
上記の反応式ではショ糖の水酸基の全てにエピクロロヒドリンが付加する場合を例示している。このようにして生じたエピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子は、次の式(IV)の構造を備えている:

【0040】
式(IV):
【化14】
JP2017141991A1_000015t.gif

【0041】
式IVにおいて、aは、1であり、
bは、ショ糖単位の水酸基のうち、エピクロロヒドリンと反応することなく残された水酸基の数(ショ糖単位1個に対する平均数)を示し、例えば0~8、1~6、2~5の範囲であり(ただし、8は除く)、
cは、ショ糖の水酸基に由来するO(酸素)とO(酸素)とを結合するエピクロロヒドリン架橋(O)-CH2-CH(OH)-CH2-(O)の数(ショ糖単位1個に対する平均数)を示し、例えば0~8、1~6、2~5の範囲であり(ただし、0は除く)、
aとbとcとは、 8×a=b+c の関係式を満たし、
nは、ショ糖多量体高分子の平均重合度を示し、例えば10~2,000、50~1,500、100~1,200の範囲である。

【0042】
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子の合成は、具体的には、例えば特許文献2(米国特許第3300474号)のExample 1、4等の開示にしたがって行うことができる。得られたショ糖多量体高分子は、公知の手段によって適宜分画して、所望の分子量の画分を得ることができる。市販の製品として、例えば、GEヘルスケア社製のFicoll PM70(分子量7万)などをあげることができる。

【0043】
好適な実施の態様において、エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子の分子量は、例えば10,000~1,000,000、40,000~700,000、50,000~500,000とすることができる。

【0044】
エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子は、動物細胞凍結保存液において、例えば0.1%以上、1%以上、2.5%以上、5%以上、7.5%以上、10%以上、15%以上の重量%濃度で含有させることができ、あるいは例えば30%以下、25%以下、20%以下の重量%濃度で含有させることができ、例えば1%~30%、7.5~30%、10%~30%、15%~25%とすることができる。好適な濃度範囲は、動物細胞凍結保存液のポリマー成分の種類と濃度、例えばBSA-PLL、BSA-SA-PLL、GA-PLL、DMGA-PLLなどの濃度を考量して、調製することができ、さらに他の成分の種類と濃度、例えばスクロース、エチレングリコール、プロピレングリコールなどの濃度を考量して、調製することができる。

【0045】
[動物細胞凍結保存液]
本発明の動物細胞凍結保存液は、上記動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤を含有する生理溶液である。生理溶液としては、特に制限はなく、例えば、公知の組成の生理食塩水、PBS、細胞培養培地等をあげることができる。動物細胞凍結保存液に含有される動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤は、例えば2~40重量%、3~30重量%、5~20重量%とすることができる。あるいは、両性高分子の分子量が2000~20000の場合に、例えば1~100mM、5~50mM、10~30mMの濃度とすることができる。

【0046】
[スクロース]
好適な実施の態様において、動物細胞凍結保存液には、スクロース(Su)が、含有される。スクロースの含有量は、例えば0.1~1M、0.3~0.6Mの範囲とすることができる。

【0047】
[エチレングリコール、プロピレングリコール]
好適な実施の態様において、動物細胞凍結保存液には、エチレングリコール(EG)又はプロピレングリコール(PG)が含有され、好ましくはエチレングリコールが含有される。エチレングリコール等は、動物細胞凍結保存液において有効な成分であるが、その含有量は細胞毒性の観点から少ないほうが好ましい。本発明によれば、この含有量を低減しつつ、十分に優れたガラス化能を実現することができるために、エチレングリコール濃度を、例えば3~8M、4~7M、4.5~7M、5~7M、4M以上、4.5M以上などの範囲から選択して使用することができる。

【0048】
[動物細胞凍結保存液の好適な組成]
好適な実施の態様において、ポリマー(両性高分子)としてDMGA-PLL25mMを使用して、例えばスクロース0.5M以上、EG6M以上、エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子10重量%以上、例えばスクロース0.75M以上、EG5.5M以上(又はEG6M以上)、エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子10重量%以上の動物細胞凍結保存液とすることができる。

【0049】
好適な実施の態様において、ポリマー(両性高分子)としてCOOH-PLL(SA-PLL)25mMを使用して、例えばスクロース0.5M以上、EG6.5M以上、エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子20重量%以上、例えばスクロース0.75M以上、EG6M以上(又はEG6.5M以上)、エピクロロヒドリン架橋されたショ糖多量体高分子10重量%以上(又は20重量%以上)の動物細胞凍結保存液とすることができる。

【0050】
[動物細胞凍結保存方法]
本発明の動物細胞凍結保存方法は、動物細胞凍結保存液中へ、動物細胞を浸漬する工程、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、降温して凍結する工程、を含む方法によって実施することができる。

【0051】
好適な実施の態様において、動物細胞を、降温して凍結する工程の後に、凍結した、動物細胞凍結保存液中の動物細胞を、昇温して解凍する工程、を行うことができる。

【0052】
[降温と結晶化]
動物細胞の損傷を防ぐためには、降温して凍結する際に、凍結保存液に結晶化が生じることなく、ガラス化状態(アモルフォス状態)を維持したままで、凍結できることが好ましい。降温速度を大きくすれば結晶化が生じにくくなるが、降温速度の増大には、細胞の取り扱いについての制約の増大が伴うために、熱容量が大きく熱伝導が不均一な三次元細胞構造体、組織、臓器等では、降温速度の増大によるひび割れ、クラックの形成などによる組織の破壊などのため、困難な選択肢となる。本発明によれば、例えば5℃/分~50℃/分、10℃/分~30℃/分の範囲の降温速度から選択して、結晶化を生じることなく、ガラス化状態で凍結することができる。結晶化の発生の有無は、実施例に示すDSC測定によって、検出することができる。

【0053】
[昇温と再結晶化]
動物細胞をいったんガラス化状態で凍結しても、昇温して解凍する際に、ガラス化状態が破れて、凍結保存液の再結晶化が生じてしまうことがあり、動物細胞の凍結保存による損傷を防ぐためには、この再結晶化を防いで、解凍できることが好ましい。昇温速度を大きくすれば再結晶化が生じにくくなるが、昇温速度の増大には、降温速度と同様に、細胞の取り扱いについての制約の増大が伴うために、熱容量が大きく熱伝導が不均一な三次元細胞構造体、組織、臓器等では、昇温速度の増大によるひび割れ、クラックの形成などによる組織の破壊などのため、困難な選択肢となる。本発明によれば、例えば5℃/分~100℃/分、5℃/分~50℃/分、10℃/分~50℃/分の範囲の昇温速度から選択して、再結晶化を生じることなく、ガラス化状態を維持して解凍することができる。再結晶化の発生の有無は、実施例に示すDSC測定によって、検出することができる。

【0054】
[ガラス化能]
本発明におけるガラス化能とは、ガラス状態を維持して結晶化を防ぐ能力であり、例えば、降温時に結晶化を防ぐ能力、あるいは昇温時に再結晶化を防ぐ能力のいずれであってもよく、両方であってもよい。降温時又は昇温時のいずれかにおける能力が優れていれば、優れたガラス化能を有することとなる。優れたガラス化能を備えた動物細胞凍結保存液を使用すれば、熱容量が大きく熱伝導が不均一な三次元細胞構造体、組織、臓器等に対しても、良好な凍結保存を可能とするので、本発明の動物細胞凍結保存液は、三次元細胞構造体、組織、臓器等の形態の動物細胞に対する使用に好適なものである。そのために、本発明の動物細胞凍結保存液によれば、動物細胞を高い生存率で、凍結することができ、保存することができ、解凍することができる。

【0055】
[凍結保存]
一般に、急激に液体窒素に浸漬するようなガラス化法の場合、いったん達成されたガラス状態は、水のガラス転移点(一般に-130℃付近)以下である液体窒素温度では半永久的にガラス状態を維持できる。しかし、これより高温である電気フリーザー中で放置した場合には、それが熱力学的にいずれは結晶化して、氷晶が形成される。そこで、利便性の高い電気フリーザーを利用して、凍結保存を実現するために、より高い温度下で凍結保存ができるような、優れたガラス化状態を維持できることが求められていた。本発明の動物細胞凍結保存液によれば、ガラス化状態が極めて安定して維持されるために、より高い保存温度での凍結保存(実施例において例えば-80℃で1日保存)によっても、高い細胞生存率を維持することができる。凍結した後に保存する温度は、ガラス化状態維持のためにはより低い温度が好ましいことは言うまでもないが、本発明によれば、例えば-100℃以下、-130℃以下、あるいは例えば-196~-80℃、-130~-100℃の保存温度とすることができ、例えば2時間以上、6時間以上、0.5日以上、1日以上、あるいは1日~10年以上の保存日数とすることができる。

【0056】
[ガラス転移点]
本発明の動物細胞凍結保存液は、上記動物細胞凍結保存液用ガラス化状態安定化剤を含有することによって、従来よりも低いガラス転移点を達成している。好適な実施の態様において、動物細胞凍結保存液のガラス転移点は、例えば-135℃~-100℃、-135℃~-80℃、-120℃~-115℃とすることができる。
【実施例】
【0057】
以下に実施例をあげて、本発明を詳細に説明する。本発明は、以下に例示する実施例に限定されるものではない。なお、実施例中、特にことわりのない限り「%」及び「部」はそれぞれ重量%及び重量部を示す。
【実施例】
【0058】
[COOH-PLLの合成]
無水コハク酸(SA、東京化成)を、εポリLリジン(25%水溶液、JNC、平均分子量4000)のアミノ基に対して、15~50mol%(あるいは15~65mol%)となるように添加し、50℃で1時間反応させ、カルボキシル化ポリリジン(COOH-PLL)を作成した。なお、出発材料であるεポリLリジン(PLL)の量に換算して10重量%の濃度で使用した場合に、PLLの平均分子量4000の値から25mMに相当するので、例えば、COOH-PLLの濃度の表記としてPLL換算10重量%となる場合には、以下では25mMと表記することがある。このカルボキシル化ポリリジンは、以下において、SA-PLL、又はCOOH-PLLと記載することがある。特に記載がない場合には、COOH-PLLのカルボキシル基導入量はεポリLリジンの側鎖のアミノ基に対して65%であり、これをPLL(0.65)又はSA(65)-PLLと記載することがある。このCOOH-PLLの合成の反応式を、以下に示す。
【実施例】
【0059】
【化15】
JP2017141991A1_000016t.gif
【実施例】
【0060】
[BSA-PLLの合成]
ブチル無水コハク酸(BSA、東京化成)を、εポリLリジン(25%水溶液、JNC、平均分子量4000)のアミノ基に対して、15~50mol%(あるいは15~65mol%)となるように添加し、50℃で1時間反応させ、ブチルカルボキシル化ポリリジン(BSA-PLL)を作成した。なお、出発材料であるεポリLリジン(PLL)の量に換算して10重量%の濃度で使用した場合に、PLLの平均分子量4000の値から25mMに相当するので、例えば、BSA-PLLの濃度の表記としてPLL換算10重量%となる場合には、以下では25mMと表記することがある。このBSA-PLLの合成の反応式を、以下に示す。上段が反応物、下段が生成物である。
【実施例】
【0061】
【化16】
JP2017141991A1_000017t.gif
【実施例】
【0062】
[BSA-SA-PLLの合成]
εポリLリジン(25%水溶液、JNC、平均分子量4000)のアミノ基に対して、上記ブチル無水コハク酸によるブチル化に加えて、上記無水コハク酸(SA)によるカルボキシル化を行って、ブチルカルボキシル化-カルボキシル化-ポリリジン(BSA-SA-PLL)を作成した。後述する略号中のカッコ内の数字は、ポリリジンのアミノ基に対するそれぞれのカルボキシル基の導入率を示す。例えばBSA(35)-SA(30)-PLLは、ポリリジンのアミノ基のうち、35%をBSAと反応させ、30%をSAと反応させた両性電解質ポリマーを示す。トータルのカルボキシル基導入量を65%とした。他にBSA(15)-SA(50)-PLL、BSA(50)-SA(15)-PLLも合成した。なお、単にBSA-PLLと表記した場合には、50%をBSA-PLLとのみ置換したBSA(50)-PLLであり、SAと反応させていないものである。なお、出発材料であるεポリLリジン(PLL)の量に換算して10重量%の濃度で使用した場合に、PLLの平均分子量4000の値から25mMに相当するので、例えば、BSA-SA-PLLの濃度の表記としてPLL換算10重量%となる場合には、以下では25mMと表記することがある。
【実施例】
【0063】
[DMGA-PLLの合成]
3,3-ジメチルグルタル酸無水物(DMGA、シグマアルドリッチ)を、εポリLリジン(25%水溶液、JNC、平均分子量4000)のアミノ基に対して、15-50mol%(あるいは15-65mol%)となるように添加し、50℃で1時間反応させ、ジメチルグルタルカルボキシル化ポリリジン(DMGA-PLL)(3,3ジメチル無水グルタル化ポリリジン)を作成した。なお、出発材料であるεポリLリジン(PLL)の量に換算して10重量%の濃度で使用した場合に、PLLの平均分子量4000の値から25mMに相当するので、例えば、DMGA-PLLの濃度の表記としてPLL換算10重量%となる場合には、以下では25mMと表記することがある。この3,3-ジメチルグルタル酸無水物(DMGA)の構造式を以下に示す。(このDMGA-PLLの合成の反応式を、以下に示す。なお、DMGA-PLLの構造式中の2種類の繰り返し単位は、εポリLリジンの鎖中にDMGAによる修飾反応がなされた結果として、必ずしも規則的あるいは周期的に出現するものではなく、ポリマーの鎖中に存在する割合のみを規定することが通常であることを当業者は理解している。つまり、繰り返しの値X及びYは、分子内における各部分構造のモル分率を意味する。Y/(X+Y)の比率は、DMGAによって修飾された繰り返し単位の含有率であり、例えば0.5~0.70、0.5~0.65の範囲とすることができる。)
【実施例】
【0064】
【化17】
JP2017141991A1_000018t.gif
【実施例】
【0065】
【化18】
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【実施例】
【0066】
[ガラス化液の調製]
エチレングリコール(EG)とスクロースの混合溶液(リン酸緩衝液PBS溶液)をベースとし、各カルボキシル化ポリリジンを最終12.5mMとなるように調整したガラス化液を作成した。スクロースの濃度は0.5Mで固定し、EGの濃度を4-6.5Mまで変えた。
【実施例】
【0067】
[DSC測定]
示差走査熱量計(DSC)(セイコーインスツル社製、製品名DSC6200)による各ガラス化液の評価を以下のように行った。
【実施例】
【0068】
各ガラス化液を、10μL、DSC用のアルミパンに乗せ、液体窒素によって、10℃/minで温度を-120度まで下げていき、DSC測定のグラフのピークの有無から結晶化の有無を確認した。さらにそこから10℃/minで室温まで昇温し、DSC測定のグラフのピークの有無から再結晶化の有無を確認した。
【実施例】
【0069】
[参考比較例1]
[DSCによる従来のガラス化液の再結晶化評価]
従来のガラス化液の特性を、液体窒素でいったん凍結した後に、上記のDSC測定の手順で、ただし50℃/minの昇温速度として、評価した。従来のガラス化液としては、以下のものを使用した。これらのDSC測定結果を図1に示す。
・DAP213: DMSO 2M、アセトアミド 1M、プロピレングリコール 3M を含む水溶液
・EG6.5M-Suc0.75M: エチレングリコール 6.5M、スクロース0.75M を含む水溶液
・EG6.5M-Suc0.75M-PLL(0.65)10%: エチレングリコール 6.5M、スクロース0.75M、SA(65)-PLL 10重量% を含む水溶液
【実施例】
【0070】
図1は昇温速度50℃/minでの従来のガラス化液のDSCの測定の結果を示すグラフである。DAPは再結晶化が生じたことを示す発熱ピークが観察された。EG6.5M-Suc0.75Mでも、同様に再結晶化が生じたことを示す発熱ピークが観察された。グラフにおいて確認の便宜のために、これらの発熱のピークを楕円で囲んだ。PLL(0.65)を添加したガラス化液、すなわちEG6.5M-Suc0.75M-PLL(0.65)10%では、再結晶化が生じたことを示す発熱ピークが観察されなかった。
【実施例】
【0071】
[参考例1]
[DSCによるガラス化液の結晶化試験]
各ガラス化液の結晶化の特性を、上記のDSC測定の手順(ただし、降温速度10℃/min、昇温速度10℃/min)によって、評価した。ガラス化液としては、以下のものを使用した。DSC測定結果を、図2a(COOH-PLL)、図2b(BSA-PLL)、図2c(BSA(35)-SA(30)-PLL)にそれぞれ示す。
・COOH-PLL: SA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・BSA-PLL: BSA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・BSA(35)-SA(30)-PLL: BSA(35)-SA(30)-PLL 25mM、エチレングリコール 6M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0072】
図2aは、COOH-PLLによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、-70℃~-80℃付近で、結晶化を示すピークが観察された。すなわち、降温によって結晶化が生じた。
【実施例】
【0073】
図2bは、BSA-PLLによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0074】
図2cは、BSA(35)-SA(30)-PLLによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0075】
[参考例2]
[DSCによるガラス化液の結晶化試験]
各ガラス化液の結晶化の特性を、上記のDSC測定の手順(ただし、降温速度10℃/min、昇温速度10℃/min)によって、評価した。ガラス化液としては、以下のものを使用した。これらは、参考例1のBSA-PLLにおいて、エチレングリコール濃度を、6Mから、それぞれ5M及び4.5Mへと減少させたガラス化液である。DSC測定結果を、図3a(BSA-PLL、EG5M)、図3b(BSA-PLL、EG4.5M)にそれぞれ示す。
・BSA-PLL、EG5M: BSA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・BSA-PLL、EG4.5M: BSA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 4.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0076】
図3aは、BSA-PLL、EG5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0077】
図3bは、BSA-PLL、EG4.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークが観察された。
【実施例】
【0078】
[参考例3]
[DSCによるガラス化液の結晶化試験]
各ガラス化液の結晶化の特性を、上記のDSC測定の手順(ただし、降温速度10℃/min、昇温速度10℃/min)によって、評価した。ガラス化液としては、以下のものを使用した。これらは、参考例1のBSA(35)-SA(30)-PLLにおいて、エチレングリコール濃度を、6Mから、5.5Mへと減少させたガラス化液である。DSC測定結果を、図4(BSA(35)-SA(30)-PLL、EG5.5M)に示す。
・BSA(35)-SA(30)-PLL: BSA(35)-SA(30)-PLL 25mM、エチレングリコール 5.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0079】
図4は、BSA(35)-SA(30)-PLL、EG5.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0080】
[参考例4]
[DSCによるガラス化液の再結晶化試験]
各ガラス化液の結晶化の特性を、上記のDSC測定の手順(ただし、降温速度10℃/min、昇温速度40℃/min)によって、評価した。ガラス化液としては、以下のものを使用した。DSC測定結果を、図5a(COOH-PLL)、図5b(BSA-PLL)、図5c(BSA(35)-SA(30)-PLL)にそれぞれ示す。
・COOH-PLL: SA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・BSA-PLL: BSA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・BSA(35)-SA(30)-PLL: BSA(35)-SA(30)-PLL 25mM、エチレングリコール 6.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0081】
図5aは、COOH-PLLによるガラス化液のDSC測定による再結晶化評価の結果示すグラフである。昇温過程(グラフの下半分)において、-50℃~-20℃付近で、再結晶化を示すピークが観察された。すなわち、昇温によって再結晶化が生じた。
【実施例】
【0082】
図5bは、BSA-PLLによるガラス化液のDSC測定による再結晶化評価の結果を示すグラフである。昇温過程(グラフの下半分)において、再結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、昇温によって再結晶化が生じることなく、ガラス化状態から液体状態へと移行した。
【実施例】
【0083】
図5cは、BSA(35)-SA(30)-PLLによるガラス化液のDSC測定による再結晶化評価の結果を示すグラフである。昇温過程(グラフの下半分)において、再結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、昇温によって再結晶化が生じることなく、ガラス化状態から液体状態へと移行した。
【実施例】
【0084】
[参考例5]
[細胞生存率試験]
各ガラス化液の細胞毒性を以下の細胞生存率試験によって評価した。
【実施例】
【0085】
MSC(間葉系幹細胞)(理研バイオリソースセンター)をシャーレで培養して、細胞シートを調製した。次に、調製した細胞シートを以下に示す各ガラス化液に0℃で20分間浸漬した。その後、細胞シートをTripan Blue染色した後に、倒立位相差顕微鏡で観察して、生存率を測定した。
【実施例】
【0086】
次のガラス化液について得られた結果を図6aに示す。
・BSA-PLL: BSA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・COOH-PLL: SA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・Control: エチレングリコール 5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0087】
次のガラス化液について得られた結果を図6bに示す。
・BSA-SA-PLL: BSA(35)-SA(30)-PLL 25mM、エチレングリコール 5.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・COOH-PLL: SA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・Control: エチレングリコール 5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0088】
図6a及び図6bは、各ガラス化液による細胞生存率を示すグラフである。BSA-SA-PLLは、BSA-PLLよりも細胞生存率が向上して、COOH-PLL及びControlを超える値となっていた。
【実施例】
【0089】
[参考例1~5及び参考比較例1の結果のまとめ]
無水コハク酸のみで65%カルボキシル化したCOOH-PLLでは、降温過程で結晶化を抑制するのに必要なEGの濃度は6.5M必要であったが、BSA-PLLではEGを5Mまで下げてもガラス化が可能であった。BSA-PLLのガラス化能の高さが確認された。
【実施例】
【0090】
BSA(35)-SA(30)-PLLを使用した場合、EGの濃度が5.5Mまで下げてもガラス化を確認できた。BSAが多い方がガラス化能は高いが、細胞生存率がやや減少する(細胞毒性がやや大きくなる)傾向にあるが、BSA(35)-SA(30)-PLLは十分に細胞生存率が大きかった。
【実施例】
【0091】
昇温過程では、40℃/minにすると、COOH-PLLでは再結晶化が見られていたところ、BSA-PLLでは再結晶化のピークも消失した。このように、BSA-PLLでは、再結晶化も抑制されることが分かり、ガラス状態の安定性が確認された。
【実施例】
【0092】
[参考例6]
[DSCによるガラス化液の結晶化試験]
各ガラス化液の結晶化の特性を、上記のDSC測定の手順(ただし、降温速度10℃/min、昇温速度10℃/min)によって、評価した。ガラス化液としては、以下のものを使用した。DSC測定結果を、図7a(DMGA-PLL、EG6M)、図7b(DMGA-PLL、EG5M)、図7c(DMGA-PLL、EG4.5M)、図7d(DMGA-PLL、EG4M)にそれぞれ示す。
・DMGA-PLL、EG6M: DMGA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 6M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・DMGA-PLL、EG5M: DMGA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・DMGA-PLL、EG4.5M: DMGA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 4.5M、スクロース 0.5M を含む水溶液
・DMGA-PLL、EG4M: DMGA(65)-PLL 25mM、エチレングリコール 4M、スクロース 0.5M を含む水溶液
【実施例】
【0093】
図7aは、DMGA-PLL、EG6Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0094】
図7bは、DMGA-PLL、EG5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0095】
図7cは、DMGA-PLL、EG4.5Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、結晶化を示すピークは観察されなかった。すなわち、降温によって結晶化が生じることなく、ガラス化状態が得られた。
【実施例】
【0096】
図7dは、DMGA-PLL、EG4Mによるガラス化液のDSC測定による結晶化評価の結果を示すグラフである。降温過程(グラフの上半分)において、-50℃~-60℃付近で、結晶化を示すピークが観察された。
【実施例】
【0097】
[参考例7]
参考例7として、後述する実験を行った。特に記載のない限り、その他の条件は参考例1と同様にして行った。
【実施例】
【0098】
[ガラス化液の調製]
エチレングリコール(EG)とスクロースの混合溶液(PBS)をベースとし、各カルボキシル化ポリリジンを最終25mMになるように調整したガラス化液を作成した。スクロース(Su)の濃度は0.5Mで固定し、EGの濃度を4Mから6.5Mまで変えた。使用したガラス化液の組成は、以下の通りである:
・Control : Su0.5M, EG6.5M : 図8
・SA-PLL(COOH-PLL)25mM, Su0.5M, EG6.5M : 図9
・COOH-PLL25mM, Su0.5M, EG5.5M : 図10a
・COOH-PLL25mM, Su0.5M, EG5M : 図10b
・BSA-PLL25mM, Su0.5M, EG5M : 図11a
・BSA-PLL25mM, Su0.5M, EG4.5M : 図11b
・DMGA-PLL 25mM, Su0.5M, EG4.5M : 図12a
・DMGA-PLL 25mM, Su0.5M, EG4M : 図12b
・COOH-PLL 25mM, Su0.5M, EG6M : 図13a
・BSA-PLL 25mM, Su0.5M, EG6M : 図13b
・DMGA-PLL 25mM, Su0.5M, EG6M : 図13c
【実施例】
【0099】
[DSC測定]
各ガラス化液の評価を以下の様に行った。
各ガラス化液を10μL、DSC用のアルミパンに載せ、液体窒素によって10℃/minで温度を-170℃まで下げていき、結晶化およびガラス化の有無を確認した。さらにそこから10℃/minで室温まで昇温し、再結晶化の有無を確認した。
【実施例】
【0100】
図8はガラス化液としてポリマー無しのEG6.5M、スクロース0.5Mの溶液、図9はガラス化液としてCOOH-PLL25mM、EG6.5M、スクロース0.5M溶液を10℃/minで降温、昇温した時のDSCカーブである。図8より、ポリマーが無い時は-90℃付近に結晶化のピークが、-30℃付近に融解のピークが見られた。一方、COOH-PLLを添加した際は、結晶化のピークが見られず、-130℃付近にガラス転移点が見られ、ガラス化していることが示された。また、昇温時には-60℃付近に再結晶化のピークも確認された。
【実施例】
【0101】
図10aと図10bは、COOH-PLL添加ガラス化液のEGの濃度を5.5Mおよび5.0Mに低下させた時の結果であるが、5.5Mではガラス化が確認されたが、5Mでは結晶化のピークが見られた。COOH-PLLの結晶化抑制効果はEG5.5M以上で発揮されることが確認できた。
【実施例】
【0102】
一方で、図11a、図11bからBSA-PLLの結晶化抑制EG濃度は5Mであり、図12a、図12bよりDMGA-PLLの結晶化抑制EG濃度は4.5Mとなった。BSA-PLLの結晶化抑制効果はEG5M以上で発揮されることが確認できた。一方、DMGA-PLLの結晶化抑制効果はEG4.5M以上で発揮されることが確認できた。これらの結果から、合成して比較したポリマー中で、DMGA-PLLが最も高い結晶化抑制効果を持つことが確認できた。
【実施例】
【0103】
図13a、図13b、図13cに、3種のポリマーのEG6.0M、スクロース0.5M溶液のDSC結果を示す。すべてのポリマーにおいてこの濃度のEGでは結晶化は起こらず、ガラス化していることが確認される。一方、図13a、図13bから、COOH-PLLとBSA-PLLでは昇温時に再結晶化が見られたのに対し、図13cからはDMGA-PLLでは再結晶化も見られなかった。これらの結果より、DMGA-PLLでは結晶化抑制効果、再結晶化抑制効果ともに、他のポリマーよりも効果が高いことが確認された。
【実施例】
【0104】
[参考例8]
[細胞生存率試験]
次に、これらポリマーを使用したガラス化液でヒト間葉系幹細胞(MSC)(理研バイオリソースセンター)シートをガラス化保存して、細胞の生存率を確認する実験を、後述の手順で行った。この実験の手順の概要を示す説明を、スキーム1として示す。使用したガラス化液の組成は、以下の通りである:
・control: EG6M, Su0.5M : 図14a
・COOH-PLL: COOH-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図14b
・BSA-PLL: BSA-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図14c
・DMGA-PLL: DMGA-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図14d
・control: EG6M, Su0.5M : 図15のa
・COOH-PLL: COOH-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図15のb
・BSA-PLL: BSA-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図15のc
・DMGA-PLL: DMGA-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図15のd
【実施例】
【0105】
スキーム1:
JP2017141991A1_000020t.gif
【実施例】
【0106】
MSCは10%ウシ胎児血清添加ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)を使用し、37℃のインキュベータ中で培養した。3.5cm細胞培養用シャーレ(IWAKI)にコンフルエントになった後、1週間継続して培養した細胞シートを実験に用いた。
培養液を除去した後、MSCシートに20%EG/DMEM溶液を2mL添加し、室温で25分放置し、平衡化させた。その後、溶液を除去した後、氷温で各ガラス化液を500μL添加し、20分放置後、液体窒素蒸気から1cmの地点にシャーレを維持し、凍結した。このときの液体窒素蒸気からの距離で凍結スピードを制御することが可能であり、蒸気から1cmの地点では約10℃/minの凍結スピードが得られることが分かっている。その後、蒸気雰囲気下で10分放置し、十分固化した後、液体窒素の浸漬し、凍結を完了させた。続いて解凍操作にうつった。解凍は、液体窒素から取り出したMSCシート培養ディッシュに37℃に暖めた1Mスクロース/DMEMを3ml加え、1分後に除去した。次に0.5Mスクロース/DMEM溶液を3mL加え、3分後に除去した。続いてDMEMを3mL加え、5分後に除去を2回くり返し、最後はDMEMを2mL添加して37℃のインキュベーター中で培養にうつった。翌日、Live/Deadアッセイにより生存率を評価した。
【実施例】
【0107】
この実験の結果を図14a、図14b、図14c、図14dに示す。図14a~14dはそれぞれのガラス液を使用して上記手順で凍結解凍した細胞シートを二重染色した蛍光顕微鏡写真であり、視野の右下のバーは100μmを示す。Live/Deadアッセイによって、生細胞はCalseinAMで緑色に染色されており、死細胞はエチジウムホモダイマーで赤色に染色されている。図14a、図14b、図14c、図14dの視野中の生細胞(緑色染色細胞)と死細胞(赤色染色細胞)の数をそれぞれカウントして生存率を求めた。ポリマー無しのガラス化液(図14a)では30%程度の生存率であったのに対し、COOH-PLLの系(図14b)では75%、BSA-PLL系(図14c)では55%、DMGA-PLL系(図14d)では93%であった。この値を棒グラフにして、図15として示す。図15の横軸のa、b、c、dは、それぞれ図14のa、b、c、dに対応する。この結果から、DMGA-PLLの効果が高いことが確認された。
【実施例】
【0108】
[実施例1、比較例1~3]
[ガラス転移点の向上]
一般に水のガラス転移点は-130℃付近である。急激に液体窒素に浸漬するようなガラス化法の場合、一度達成されたガラス状態は、液体窒素温度では半永久的にガラス状態を維持できる。それは液体窒素温度が水のガラス転移点以下であるからである。一方、ガラス状態の水を-80℃などのフリーザー中で放置した場合、原理的には、熱力学的にいずれは結晶化を起こし、氷晶が形成されることになる。従ってフリーザー中でガラス化保存するためには、水のガラス転移点をフリーザーの温度以上に上げることが望ましい。このためにエチレングリコールやスクロースなど溶質を高濃度に添加するなど最適なガラス化液の組成を検討した。
【実施例】
【0109】
具体的には、比較例1~3として、DAP213、EG6.5M・スクロース0.5M、EG6.5M・スクロース0.5M・COOH-PLL25mMの3種類のガラス化液を用意し、DSC測定を行い、ガラス転移点を求めた。それぞれの溶液を10μLアルミ製パンに入れ、液体窒素に浸漬することで一旦ガラス化させた。それをあらかじめ-170℃に試料室を冷やしたDSC(TAインスツルメンツ、Discovery DSC)にセットし、10℃/minで昇温し、ガラス転移点を求めた。
【実施例】
【0110】
図16は、各種ガラス化液の再結晶化挙動を示すグラフである。図16に示すように、DAPではガラス転移点は-126℃、EG6.5M・スクロース0.5Mの溶液では-123℃であったが、COOH-PLL系のガラス化液を添加し溶液では-119℃まで上昇させることが可能であった。
【実施例】
【0111】
次に、実施例1として、親水性多糖類としてショ糖多量体高分子(製品名 Ficoll(フィコール)、平均分子量7万、GEヘルスサイエンス製)を10%添加して、同様の試験をした。すると、図17に示すようにTgは-113℃まで上昇させることが可能であった。入手容易な市販の電気的フリーザーには-110℃および-130℃のものがあり、-110℃のフリーザーにてガラス化保存可能な範囲まで近づいている。図17は、DMGA-PLLガラス化液(DMGA-PLL25mM、Su 0.5M、EG 6.0M、Ficoll 10%)の再結晶化挙動を示すグラフである。
【実施例】
【0112】
[ガラス化評価試験]
各ガラス化液を-80℃のフリーザー中で3時間放置した場合の結晶化の有無について図18、図19に示す。
【実施例】
【0113】
図18は、EG6M、スクロース0.5M、フィコール10%溶液に対して、DMGA-PLL又はCOOH-PLL(SA-PLL)を25mM添加したガラス化液を、ポリスチレン樹脂製96ウェルマイクロプレートへ、50μLずつ注入して、-80℃に3時間放置した後の外観を示す写真である。COOH-PLLを添加したウェルでは白く不透明となって、結晶化が見られた(図18の左側から7列目及び8列目のウェル)。これに対し、DMGA-PLLを添加したウェルではすべて透明のままであり、結晶化が見られずガラス状態であった(図18の左側から1列目及び2列目のウェル)。
【実施例】
【0114】
図19ではEG6M、スクロース0.5M、DMGA25mMの溶液に対して、フィコール、プルラン(シグマアルドリッチ製)をそれぞれ添加し、ポリスチレン樹脂製96ウェルマイクロプレートへ、50μLずつ注入して、-80℃に3時間放置した後の外観を示す写真である。写真中の(1)~(4)の番号は、それぞれ3ウェルずつ以下の組成の溶液を注入したことを示す:
(1) EG6M、スクロース0.5M
(2) EG6M、スクロース0.5M、DMGA25mM
(3) EG6M、スクロース0.5M、DMGA25mM、フィコール10%
(4) EG6M、スクロース0.5M、 DMGA25mM、プルラン10%
【実施例】
【0115】
図19において、フィコール添加の場合(上記(3))のみが、完全に透明を維持してガラス状態であった。DMGA無し、多糖類無し、プルラン添加の系では、すべて白く不透明となって、結晶化が見られた(上記(1)、(2)、(4))。
【実施例】
【0116】
図19に示した実験系をEGの濃度、スクロースの濃度を種々変えて行った結果を表1にまとめた。表1は各ガラス化液の-80℃3時間放置した後のガラス化評価を示す表である。ポリマーとしては、DMGA-PLL 又はCOOH-PLL を25mM添加するか、あるいはポリマーを加えなかった。親水性多糖類として、フィコール又はプルランを添加するか、あるいは親水性多糖類を加えなかった。ガラス化の評価は、目視観察によって、該当する試料の全てのウェルが透明であった場合には、常にガラス化していたと評価して、○(マル)を付した。該当する試料の全てのウェルが白く不透明となっていた場合には、常に結晶化していたと評価して、×(バツ)を付した。該当する試料のウェルの一部が透明であり一部が白く不透明となっていた場合には、ガラス化する試料と結晶化する試料があると評価して、△(三角)を付した。表1のように、EGの濃度が高いほどガラス状態が維持される傾向があり、DMGAの方がCOOH-PLLよりも効果が高く、フィコールの効果も顕著であった。
【実施例】
【0117】
【表1】
JP2017141991A1_000021t.gif
【実施例】
【0118】
[細胞保存試験]
次に、ヒト間葉系幹細胞(MSC)(理研バイオリソースセンター)シートをガラス化保存する実験を行った。
MSCは10%ウシ胎児血清添加ダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)を使用し、37℃のインキュベータ中で培養した。3.5cm細胞培養用シャーレ(IWAKI)にコンフルエントになった後、1週間継続して培養した細胞シートを実験に用いた。
培養液を除去した後、MSCシートに20%EG/DMEM溶液を2mL添加し、室温で25分放置し、平衡化させた。その後、溶液を除去した後、氷温で各ガラス化液を500μL添加し、20分放置後、液体窒素蒸気から1cmの地点にシャーレを維持し、凍結した。このときの液体窒素蒸気からの距離で凍結スピードを制御することが可能であり、蒸気から1cmの地点では約10℃/minの凍結スピードが得られることが分かっている。その後、蒸気雰囲気下で10分放置し、十分固化した後、液体窒素の浸漬し、凍結を完了させた。続いて解凍操作にうつる。解凍は、液体窒素から取り出したMSCシート培養ディッシュに37℃に温めた1Mスクロース/DMEMを3ml加え、1分後に除去する。次に0.5Mスクロース/DMEM溶液を3mL加え、3分後に除去する。続いてDMEMを3mL加え、5分後に除去を2回くり返し、最後はDMEMを2mL添加して37℃のインキュベーター中で培養にうつる。翌日、Live/Deadアッセイにより生存率を評価した。二重染色した蛍光顕微鏡写真において、CalseinAMで染色された緑の細胞が生細胞で、エチジウムホモダイマーで染色された赤色の細胞が死細胞である。
【実施例】
【0119】
図20a、図20b、図20c、図20dは、それぞれの組成のガラス化液を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1時間放置した後、解凍洗浄し、翌日に二重染色した蛍光顕微鏡写真である。黒い部分が多いのは、細胞の剥離が見られたためであるが、明らかにCOOH-PLLやDMGA-PLLの存在で緑色の生細胞の数が多く見られる。使用したガラス化液の組成は以下である:
・EG6M, Su0.5M : 図20a
・COOH-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図20b
・DMGA-PLL 25mM, EG6M, Su0.5M : 図20c
・DMGA-PLL25mM, EG6M, Su0.5M, Ficoll 10% : 図20d
【実施例】
【0120】
図21a、図21b、図21c、図21dは、それぞれの組成のガラス化液を使用して、MSCシートを、-80℃のフリーザー中で1日放置した後、解凍洗浄し、翌日に二重染色した蛍光顕微鏡写真である。この場合、DMGA-PLLとフィコールの組み合わせで有意に緑色の細胞数が多い結果となった。使用したガラス化液の組成は以下である:
・EG6M, Su0.5M : 図21a
・COOH-PLL25mM, EG6M, Su0.5M : 図21b
・DMGA-PLL 25mM, EG6M, Su0.5M : 図21c
・DMGA-PLL25mM, EG6M, Su0.5M, Ficoll 10% : 図21d
【実施例】
【0121】
表2にこれらの定量結果として、各ガラス化液で-80℃で放置した後のMSC生存率を示す。表2に記載されているように、表1と同様の傾向を示す結果であり、EG6M、DMGA-PLL25mM、スクロース0.5M、フィコール10%のガラス化液では、-80℃においてもガラス状態がある程度維持でき、細胞の生存率を高めることが可能であった。このことは、液体窒素による凍結保存を行わなくても、MSCシートを始めとした再生医療用細胞構造体を-130℃などの市販の高性能電気冷凍庫によって凍結保存できることを示す。
【実施例】
【0122】
【表2】
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【産業上の利用可能性】
【0123】
本発明によれば、優れたガラス化能を有する動物細胞凍結保存液を得ることができる。本発明は産業上有用な発明である。
Drawing
(In Japanese)【図1】
0
(In Japanese)【図2a】
1
(In Japanese)【図2b】
2
(In Japanese)【図2c】
3
(In Japanese)【図3a】
4
(In Japanese)【図3b】
5
(In Japanese)【図4】
6
(In Japanese)【図5a】
7
(In Japanese)【図5b】
8
(In Japanese)【図5c】
9
(In Japanese)【図6a】
10
(In Japanese)【図6b】
11
(In Japanese)【図7a】
12
(In Japanese)【図7b】
13
(In Japanese)【図7c】
14
(In Japanese)【図7d】
15
(In Japanese)【図8】
16
(In Japanese)【図9】
17
(In Japanese)【図10a】
18
(In Japanese)【図10b】
19
(In Japanese)【図11a】
20
(In Japanese)【図11b】
21
(In Japanese)【図12a】
22
(In Japanese)【図12b】
23
(In Japanese)【図13a】
24
(In Japanese)【図13b】
25
(In Japanese)【図13c】
26
(In Japanese)【図14a】
27
(In Japanese)【図14b】
28
(In Japanese)【図14c】
29
(In Japanese)【図14d】
30
(In Japanese)【図15】
31
(In Japanese)【図16】
32
(In Japanese)【図17】
33
(In Japanese)【図18】
34
(In Japanese)【図19】
35
(In Japanese)【図20a】
36
(In Japanese)【図20b】
37
(In Japanese)【図20c】
38
(In Japanese)【図20d】
39
(In Japanese)【図21a】
40
(In Japanese)【図21b】
41
(In Japanese)【図21c】
42
(In Japanese)【図21d】
43